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電泳后的凝膠染色方法介紹
點(diǎn)擊次數(shù):910 更新時(shí)間:2023-02-16

實(shí)驗(yàn)概要
本文介紹了電泳后主要的凝膠染色方法,包括:標(biāo)準(zhǔn)考馬斯亮藍(lán)染色法、快速考馬斯亮藍(lán)染色法、凝膠銨銀染色法、凝膠中性銀染色法及凝膠銅染色法。

實(shí)驗(yàn)步驟
1. 標(biāo)準(zhǔn)考馬斯亮藍(lán)染色法
1) 電泳后,將凝膠轉(zhuǎn)入一潔凈的玻璃或塑料容器中。加入5倍于凝膠體積的0.25%考馬斯亮藍(lán)R-250(溶解于50%甲醇和10%乙酸中);
2) 室溫下振搖溫育4h至過夜;
3) 去除染色液,收集保存可重復(fù)使用20-40次;
4) 依次在25%甲醇和7.5%乙酸中室溫振搖下脫色。靈敏度為0.1-0.5ug蛋白/每條帶。
注:使用加熱的染色液或脫色液可以縮短染色或脫色時(shí)間。將染色液或脫色液在微波爐或水浴中加熱,(大約50-60℃),染色時(shí)間可縮短至20min,脫色時(shí)間約 1-2h。

2. 快速考馬斯亮藍(lán)染色法
1) 電泳后,將凝膠轉(zhuǎn)入一潔凈的玻璃或塑料容器中。加入5倍于凝膠體積的0.25%考馬斯亮藍(lán)R-250(溶解于50%三lv乙酸中);
2) 室溫下振搖溫育20min;
3) 去除染色液,收集保存可重復(fù)使用多次;
4) 加入數(shù)倍體積的脫色液(25%甲醇、7%乙酸)室溫振搖下脫色。必要時(shí)可更換脫色液。靈敏度為1.0ug蛋白/每條帶。

3. 凝膠銨銀染色法
1) 電泳后,將凝膠轉(zhuǎn)入一潔凈的玻璃或塑料容器中。加入5倍于凝膠體積的50%乙醇和10%乙酸,振搖30min至過夜;
2) 去除50%乙醇和10%乙酸,用去離子水清洗凝膠。加入20%乙醇, 室溫振搖30min;
3) 去除20%乙醇,再加5倍體積的20%乙醇,室溫振搖30min;
4) 去除20%乙醇,將凝膠轉(zhuǎn)入通風(fēng)柜內(nèi),加入5倍體積的用去離子水配制的5%戊二醛,室溫振搖30min;
5) 去除戊二醛,用去離子水清洗凝膠。加入5倍體積的20%乙醇,室溫振搖20min;
6) 去除20%乙醇,重復(fù)6兩次;
7) 去除20%乙醇,用去離子水清洗凝膠。再加入5倍體積的用去離子水,室溫溫育10min;
8) 去除去離子水,加入4倍體積新鮮配制的氨水/銀溶液,室溫振搖30min。配制100ml:加1.4ml 14.8mol/L氫氧化銨到100ml水中,再加入190ul 10mol/L氫氧化鈉;放置渦旋器上緩緩加入1ml新鮮配制的xiao酸銀溶液(0.8gxiao酸銀/ml水),直至出現(xiàn)沉淀物,但很快溶解。
9) 去除氨水/銀溶液,用去離子水清洗凝膠20min以上,其間更換水?dāng)?shù)次;
10) 去除水,加入5倍體積新鮮配制的0.005%檸檬酸,0.019%的甲醛。輕柔混勻,數(shù)分鐘內(nèi)條帶即顯現(xiàn)出。當(dāng)背景開始變化時(shí),去除顯影劑,用用去離子水清洗凝膠。在10%乙酸和20%乙醇中溫育凝膠,以終止反應(yīng)。靈敏度為1-10ng蛋白/每條帶。
注:操作時(shí),應(yīng)戴手套并使用潔凈的玻璃器皿,以免污染,影響反應(yīng)的靈敏度。

4. 凝膠中性銀染色法
1) 電泳后,將凝膠轉(zhuǎn)入一潔凈的玻璃或塑料容器中。加入5倍于凝膠體積的30%乙醇和10%乙酸,振搖30min至過夜;
2) 去除乙醇/乙酸溶液,加入5倍體積的30%乙醇, 室溫振搖30min;
3) 去除乙醇,再加5倍體積的30%乙醇,室溫振搖30min;
4) 去除乙醇,加入10倍體積的去離子水,室溫振搖10min;重復(fù)用去離子水清洗兩次;
5) 去除去離子水,加入4倍體積新鮮配制的0.1%xiao酸銀溶液(用室溫下貯存于棕色瓶內(nèi)的20%原液稀釋而得),室溫振搖30min;
6) 去除xiao酸銀溶液,用去離子水清洗凝膠20s;
7) 去除水,加入5倍體積的2.5%碳酸鈉和 0.02%的甲醛(pH<4.0),室溫振搖溫育,數(shù)分鐘內(nèi)條帶即顯現(xiàn)出。當(dāng)背景開始變黑時(shí),停止溫育;
8) 在1%乙酸內(nèi)清洗,停止反映。用去離子水清洗,更換數(shù)次,每次10min; 靈敏度為1-10ng蛋白/每條帶。

5. 凝膠銅染色法
凝膠銅染色法為考馬斯亮藍(lán)或銀染色法的替代染色方法。將凝膠氯化銅溶液中溫育,在Tris和SDS同時(shí)存在時(shí)可形成明顯的白色不透明的沉淀物。蛋白條仍然清晰,留下一個(gè)多肽分離模式的附染圖象。由于蛋白質(zhì)未結(jié)合在凝膠上,可通過EDTA去除Cu離子而得以洗脫,因而該方法特別適合需快速定位蛋白條帶用于免疫反應(yīng),或進(jìn)一步進(jìn)行蛋白質(zhì)化學(xué)研究。其染色模式如同考馬斯亮藍(lán)或銀染色法的凝膠,易進(jìn)行拍照。

1) 電泳后,凝膠用蒸餾水短時(shí)清洗數(shù)次,每次30s,勿洗過長時(shí)間;
2) 將凝膠轉(zhuǎn)入一潔凈的玻璃或塑料容器中。加入5倍于凝膠體積的0.3mol/L CuCl2;
3) 室溫振搖5min,較厚的凝膠可適當(dāng)延長時(shí)間。當(dāng)CuCl2進(jìn)入凝膠時(shí),在不含蛋白的區(qū)域會(huì)出現(xiàn)白色沉淀;
4) 用蒸餾水清洗數(shù)分鐘,在黑色背景下觀察結(jié)果。靈敏度為10-100ng蛋白/每條帶(0.5mm厚的凝膠)或1ug蛋白/每條帶(1mm厚的凝膠)。
注:將凝膠在0.25mol/L EDTA、0.25mol/L Tris溶液中溫育可使銅染逆轉(zhuǎn)。

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